On a examiné la régulation de la perméabilité des jonctions occlusives entre les entérocytes, en utilisant des anses perfusées in vitro, des chambres de Ussing et des couches monocellulaires cultivées. Dans cette communication, nous démontrons la capacité d'un modèle de perfusion in vivo à mesurer la perméabilité jonctionnelle occlusive et à répondre adéquatement aux stimuli luminaux physiologiques. En utilisant la molécule de ferrocyanure anionique hautement chargée, le flux d'eau a pu être évalué précisément chez le rat, et la clairance luminale de dextrans de poids moléculaire élevé a pu être utilisée pour examiner l'ouverture et la fermeture de la voie paracellulaire. En utilisant simultanément deux marqueurs de dextran de poids moléculaire différent, chaque conjugué ayant un fluorophore distinct, nous avons pu calculer les clairances luminales de ces composés par des techniques fluorométriques, en présence de nutriments luminaux ayant déjà démontré leur capacité à ouvrir les jonctions intracellulaires serrées. En l'absence de nutriments luminaux ou en présence d'un sucre tel que le mannitol, la clairance de ces composés a été négligeable. Toutefois, avec l'addition de D-glucose ou de L-alanine, la clairance des deux marqueurs de haut poids moléculaire a sévèrement augmenté. Ainsi, l'ouverture des jonctions occlusives entre les entérocytes semble être un événement physiologique qui se produit in vivo dans des conditions qui devraient se rencontrer dans la lumière. La clairance du PEG-400 n'a pas bien concordé avec celle des marqueurs de dextran, suggérant que cette sonde utilise une voie de perméation différente et pourrait ne pas être adéquate pour quantifier la voie de régulation des nutriments observée avec les anciennes sondes. Mots clés : perméabilité intestinale, transport de glucose, transport paracellulaire.[Traduit par la rédaction]